3.2.4 实验室诊断结果解读
因各种实验室检测方法均存在优势与不足，故在解读APP实验室检测结果时，需格外谨慎。目前行业内所建立的多种APP检测方法多以APX IV毒素或其抗体为基础（血清学或PCR），但当猪群感染无毒力或低毒力的APP菌株时，无临床症状且对猪群影响较小，但会影响检测结果的解读，故当APX IV呈阳性时，仍需对细菌毒力、血清型及对疫病的影响进行深入探究。目前所建立的血清学或PCR分型方法均不完善，仅能对部分血清型进行鉴别或区分，易出现假阴性。
虽可利用PCR方法直接从组织样品（如：扁桃体拭子）中检测Apx毒素，但Apx毒素也可能存在于猪放线杆菌中，故Apx毒素基因检测阳性时，最好对细菌进行纯培养，以确认病原菌种类。但对APP进行纯培养并不容易，特别是利用扁桃体拭子时，因扁桃体上有很多共生菌，而共生菌的生长速度常快于胸膜肺炎放线杆菌，而影响到分离培养结果。故分离不到胸膜肺炎放线杆菌也不能说明猪群呈APP阴性。
虽然实验室诊断尚存在一定的不足，但其是临床诊断与剖检诊断的有力补充，特别是在对猪群进行APP流行病学调查时，有着独特优势，故应综合临床症状、病理剖检、细菌分离与检测及血清学监测等方法。
3.3 屠宰场病变评估
屠宰场肺部病变评分法是生长育肥猪慢性肺炎的一种重要的回顾性诊断方法，已被广泛应用于胸膜炎（包括传染性胸膜肺炎）的感染状况调查。Vincent等人[10]发展出屠宰场胸膜炎评估系统（Slaughterhouse Pleurisy Evaluation System [ SEPS ]）。该法依据胸膜炎粘连是否存在，存在的位置、范围及严重程度对其评分，分为0～4个等级（表2）。
表2：胸膜炎的病变等级判定
但是引致胸膜炎的因素依据发生部位与形态的不同有所不同[10]，一般认为，尖叶与心叶间的粘连较轻微，多由肺炎支原体与巴氏杆菌等感染所致，对肺脏呼吸功能影响较轻微，而膈叶的胸膜炎多因传染性胸膜肺炎感染引致，偶尔也由副猪嗜血杆菌、链球菌等感染引致，对肺的呼吸功能影响也较严重[10]。据Pichai 等人[11]的屠宰场肺部评估发现：45％的肺具有胸膜炎病变（评估968只肺， 435只有胸膜炎 ），其中22例肺分离出胸膜肺炎放线杆菌，而55例肺分离出巴氏杆菌，未能确定导致胸膜炎的主导病原菌。
虽然屠宰场肺部病变评估（胸膜炎）不能确定是否由APP所致，但作为评价猪群肺部健康状况与呼吸道疾病防控措施有效性的方法，其应用越来越广泛。当猪群胸膜炎比例升高时，再结合病原分离与血清学监测进行综合诊断，可提高监测效率与降低诊断成本。
4.防控措施
饲养管理：改善饲养环境，严格执行全进全出，避免猪舍温度波动与饲养密度过大。防止低温、低湿的猪舍环境。在低温与低湿环境下，环境中易形成大量悬浮颗粒与粉尘（直径0.5 ～3µm）而携带病原菌进入肺脏。提高饲养水平和促进群体健康状态，能大大的降低猪只的易感性和发病率；
疫苗免疫：目前已商品化的APP疫苗包括全菌灭活苗与毒素亚单位疫苗两种。疫苗免疫能够有效降低APP的发病率，但不能改变猪群对APP的感染状态。因APP的血清型较多，世界各地所流行的菌型有所不同，如北美以1、5、7三个血清型为主，而欧洲多以2型为主，我国以1、3、4、5、7型为主[12]。且各血清型间的交叉保护力有限，故有时免疫效果不佳，目前我国规模化猪场对APP免疫的比例不高。此外，疫苗免疫对不可以区分APP感染动物和疫苗免疫动物的血清学监测结果解读会产生影响（基于荚膜脂多糖）。美国IDEXX公司已开发出APP ApxIV新型ELISA抗体试剂盒，未感染的免疫动物抗体检测结果为阴性，所有血清型APP（包括低致病力菌株）感染动物检测为抗体阳性，通过S/P值的水平、S/P值的分布/变化，可针对性分析猪群APP的感染风险、评估临床稳定状况、疫苗免疫评估和预警。
药物防控：种猪是最重要的APP病原携带者，策略性、阶段性有效的药物可以大大减低阳性猪病原的排出，减少临床感染；急性型APP可能会影响患猪的饮欲与食欲，故对患猪进行早期诊断并使用注射剂治疗尤为重要，如头孢噻呋、恩诺沙星等，但注射给药对患猪应激较大，是“双刃剑”，可能会导致患猪死亡率增加。若能及时判断猪群发病阶段，识别环境中的致病因素，在饲料中进行策略性给药将能有效防控本病，常用药物包括：替米考星200～400克/吨饲料；氨苄西林200～400克/吨饲料等。因本病发病非常快，且会影响患猪食欲，常认为饲料中给药防控会效果不佳，但国内外的临床实践证明，每吨饲料中添加200～400克替米考星可有效防控本病。
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